Calciumhydroxid wurde in der Zahnmedizin als Basismaterial verwendet, das die Bildung einer mineralisierten Dentinbrücke zeigen kann, jedoch keine direkte stimulierende Wirkung auf die Pulpazellen hat. Das Ziel dieser Studie war es, die antibakteriellen Eigenschaften von drei verschiedenen Zellstoffabdeckmaterialien unter Verwendung eines Direktkontakttests (DCT) zu bewerten.

Beispielsweise wurden die antibakteriellen Eigenschaften der drei Zellstoff-Verkappungsmittel als DCT bewertet. Die Vertiefungen der 96-Mikrotiterplatten für DCT (n 12) wurden mit den getesteten Zementen (Dycal, Dentsply, USA; DiaRoot BioAggregate, Diadent, Holland; Calcimol LC, Voco, Deutschland) und Kalzinol (Zinkoxid / Eugenolithzement) beschichtet. Dentsply, USA) wurde als Kontrollmaterial verwendet. Eine Suspension von Lactobacillus casei wurde bei 1 C für eine 37-Stunde auf die Oberfläche jeder Probe gegeben. Das Bakterienwachstum wurde 16 Stunden lang mit einem temperaturgesteuerten Mikrotiterplatten-Spektrophotometer überwacht. Die Wachstumskinetik in jeder Vertiefung wurde kontinuierlich bei 30 nm jede 650 Minute aufgezeichnet. Die Daten wurden mit Einweg-ANOVA und Tamhanes T2-Mehrfachvergleichstest analysiert. Das Signifikanzniveau wurde als P · 05 bestimmt.

Alle Zellstoffverkappungsmittel zeigten eine Zunahme der logarithmischen Wachstumsrate von L. casei im Vergleich zur Kontrollgruppe (P 0.05). Daher zeigten nicht alle Zellstoff-Verkappungsmittel eine antibakterielle Aktivität.

Die getesteten Zellstoff-Verkappungsmittel haben keine antibakteriellen Eigenschaften. Um eine bakterielle Kontamination zu vermeiden, sollte die Pulpa daher mit Vorsicht verwendet werden, wenn sie der Pulpa ausgesetzt ist oder sehr dünnes Dentin in der Pulpa verbleibt.

DCT-Test

DCT 10 basiert auf der turbidimetrischen Bestimmung des Bakterienwachstums in 96-Well-Mikroliterplatten (96-Well, Nunclon mit flachem Boden, Nunc, Kopenhagen, Dänemark). Die Kinetik des Wachstums in jeder Vertiefung wurde kontinuierlich alle 30 Minuten bei 650 nm unter Verwendung eines temperaturgesteuerten Spektrophotometers (μquant, Bio-Tek Instruments Inc., Winooski VT, USA) aufgezeichnet. In allen Hohlräumen wird die Seitenwand vertikal gehalten (d. H. Die Oberfläche der Platte ist senkrecht zum Boden), während die Seitenwand mit dem zu testenden Material beschichtet wird. Zellstoff-Verkappungsmittel wurden gemischt und mit den Empfehlungen der Hersteller auf die Seitenwände aufgetragen. Es wurde darauf geachtet, eine dünne Filmdicke zu haben. In dieser Studie wurde Calzinol (Zinkoxid-Eugenol-Zement) als Kontrollmaterial verwendet.

Eine Bakteriensuspension von 10 LL wurde in jede Probe gegeben und eine Stunde bei 37 C inkubiert, wobei die Platte in einer vertikalen Position blieb. Während dieser Zeit verdampfte der größte Teil der Suspensionsflüssigkeit, um direkten Kontakt zwischen allen Bakterien und der Oberfläche des zu testenden Materials herzustellen. Dann wurde in jede Vertiefung 220 LL BHI-Bouillon gegeben und die Platte in das Spektrophotometer gegeben. Das Bakterienwachstum wurde auf der Grundlage von Änderungen der optischen Dichte bei 650 nm nach direktem Kontakt mit dem getesteten Material geschätzt. Dies wurde alle 19 Minuten für 30 Stunden durch ein Spektrophotometer aufgezeichnet.

In jede Vertiefung wurde 220 LL BHI-Bouillon gegeben und die Platte in das Spektrophotometer gegeben. Das Bakterienwachstum wurde auf der Grundlage von Änderungen der optischen Dichte bei 650 nm nach direktem Kontakt mit dem getesteten Material geschätzt. Dies wurde alle 19 Minuten für 30 Stunden durch ein Spektrophotometer aufgezeichnet. In jede Vertiefung wurde 220 LL BHI-Bouillon gegeben und die Platte in das Spektrophotometer gegeben. Das Bakterienwachstum wurde auf der Grundlage von Änderungen der optischen Dichte bei 650 nm nach direktem Kontakt mit dem getesteten Material geschätzt. Dies wurde alle 19 Minuten für 30 Stunden durch ein Spektrophotometer aufgezeichnet.

Statistische Analyse

Bakterienwachstumskurven für jede Vertiefung wurden analysiert und eine Regressionslinie auf dem ansteigenden linearen Teil der Kurve wurde unter Verwendung der Gleichung yax + b berechnet. Diese Gleichung ergab den Wert der Steigung entsprechend der Wachstumsrate. Die Daten wurden mit Einweg-ANOVA und Tamhanes T2-Mehrfachvergleichstest analysiert. Das Signifikanzniveau wurde als P 0.05 bestimmt.

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